持续的系膜增殖和系膜基质增多可导致不可逆性肾小球硬化〔1〕,抑制系膜细胞增殖是增殖性肾小球疾病重要的治疗策略。S100A4 是 S100 基因家族成员,是一种钙结合蛋白〔2〕,参与肾组织内上皮-间充质转分化过程〔3〕,其对肾小球系膜细胞增殖是否有影响尚未见报告。本研究通过体外培养大鼠系膜细胞,探讨降低 S100A4 表达对系膜细胞增殖的调控作用。
1 材料方法
1. 1 实验材料 1640 细胞培养粉剂及 Tri201 试剂( GIBCO 公司) ; MicroBCA 蛋白浓度检测试剂盒、MTT( Sigma 公司) ; 小牛血清( Fetal bovine serum,FCS,Hycolon 公司) ; 羊 S100A4 抗体、小鼠 p21 抗体、小鼠 cyclinD1 抗体、小鼠 CDK2 抗体、辣根过氧化物酶标记的羊抗小鼠 IgG、羊抗兔 IgG、脂质体 TransPass R2Transfection Reagent( Biolab 公司) ; M-MLV 反转录酶( Invitrogenlife technologies 公司) ; PCR 试剂 ( TaKaRa Biotechnology 公司) ;ECL 显色试剂盒( Santa Cruz Biotechnology 公司) .
1. 2 大鼠肾小球系膜细胞系 RMC 的培养 雄性 Wistar 大鼠160 ~ 200 g 由吉林大学动物中心提供。无菌条件下取双侧肾脏,剥离肾包膜,肾皮质剪成碎块,放于重叠的三层不锈钢筛网上。收集第二层筛网上的组织移入离心管,V 型胶原酶( 0. 5 mg/ml) 消化,15%胎牛血清的 RPMI 1640 培养液于37℃、5% CO2条件下培养原代的系膜细胞,7 d 传代,经 Desmin( +) 、Ⅷ( -) 鉴定后,用于以下实验。
1. 3 S100A4-15siRNA 的设计与合成 根据 Genbank 中大鼠S100A4-15 mRNA 全长序列( AB020759. 1) 设计抑制 siRNA 的靶序列: 5'-AAGCCTTCTGTTCCTGCTACA-3',经上海吉玛公司合成双链 siRNA( siS100A4) ,正义链: 5 '-GCCUUCUGUUCCUGCUACAtt-3',反义链: 3 '-ttCGGAAGACAAGGACGAUGU-5 '.同时合成无关 siRNA 序列作为对照( siCon) : 正义链: 5'-UUCUCCGAACGUGUCACGUtt-3 ',反 义 链: 3 '-ttTTAAGAGGCUUGCACAGUGCA-5 '.合成的双链 siRNA 用 DEPC 处理的水溶解至100 μmol / L,-20℃ 冻存备用。
1. 4 siRNA 转染 细胞长至 50% ~ 60% 左右( 以 12 孔板为例) ,进行如下转染步骤( NEB TransPass R2 试剂盒) : ①25 μlA 液加入 0. 6 ml 无血清 1640 培养液中,混匀。②再加入2. 5 μlB 液体,混匀。③加入终浓度为 100 nmol / L 的 siRNA( siCon 或siS100A4) .④室温静置孵育 20 min.⑤期间待转染细胞用无血清 1640 清洗 1 遍。⑥孵育液加到细胞培养皿,37℃培养4 h.⑦细胞中加 1 ml 正常 RPMI 1640 培养液( 含血清) .⑧过夜培养。⑨更换新鲜的培养基培养 24 h 备用。
1. 5 细胞增殖的检测
1. 5. 1 MTT 法检测细胞增殖能力 大鼠系膜细胞 10 000 个 /孔接种于 96 孔板,无血清同步 16 h 后分为以下 4 组: ①无血清组; ②10%FCS 正常培养组; ③10% FCS+siCon 组; ④10% FCS+siS100A4 组,37℃ 孵育 24 ~ 48 h.在到达各时间点时弃去培养液,加入 MTT( 终浓度 5 mg/ml) 20 μl,孵育 4 h,吸去上清,每孔加入二甲基亚砜( DMSO) 200 μl,室温溶解15 min,分光光度计490 nm 读取 OD 值。每组设 6 个复孔,共重复 3 次。
1. 5. 2 流式细胞仪检测细胞周期 系膜细胞传代至25 cm2培养瓶中,无血清同步 16 h 后分组同上。培养 24 h 后收集细胞,PBS 液洗 2 次,加入 75% 乙醇固定,4℃ 过夜,次日离心后 PBS液洗 2 次,重悬于 0. 5 ml PBS 中。样品经 RNA 酶( 50 μg/ml)处理后,碘化丙啶( PI,50 μg/ml) 室温避光染色 30 min 后上机。应用 BD 流式细胞分析仪的 FACScan 测量 DNA 含量,细胞周期变化数据用 CellFIT Cell Cycle Analysis Version 2. 0 1. 2 软件分析( BD 公司) ,以细胞周期各时相细胞百分率记录数据并分析。每组 3 瓶,重复 3 次。
1. 6 Western 印迹法检测 S100A4 对细胞周期调节蛋白 p21、cyclin D1、CDK2 表达 系膜细胞传代至 25 cm2培养瓶中,转染、无血清同步 16 h 后分组同上; 培养48 h 后0. 25%胰酶消化收集细胞。Western 印迹法步骤同上: 最后分别加入小鼠 cy-clinD1 抗体( 1 ∶100 稀释) 、小鼠 p21 抗体( 1 ∶ 100 稀释) 、小鼠CDK2 抗体( 1 ∶100 稀释) 、兔 β-actin 抗体( 1 ∶1 000 稀释) ,室温孵育 4 h; TBST 洗膜 3 次,分别加辣根过氧化物酶标记的羊抗小鼠 IgG( 1 ∶1 000 稀释) 、羊抗兔 IgG( 1 ∶2 000 稀释) ,室温孵育45 min; TBST 洗膜 3 次; ECL 显影。ALPHAIMAGER 2200 凝胶图像分析系统半定量分析。
1. 7 统计学处理 计量资料采用 x±s 表示,MTT 实验采用双因素方差分析,其余采用单因素方差分析。两两比较采用 q 检验,采用 SPSS16. 0 软件进行数据处理。
2 结 果
2. 1 MTT 检测 S100A4 对系膜细胞增殖速率的影响 转染抑制 S100A4 的 siS100A4 后 48 h 细胞数明显低于正常对照组和无关 siRNA( SiCon) 组( P<0. 05) ,见表 1.【表1】
2. 2 S100A4 对系膜细胞周期的影响 siRNA 抑制 S100A4 组S 期细胞以及 S+G2/ M 期细胞数( 增殖指数) 明显低于正常对照组及无关 siRNA 转染组( P<0. 05) ,见表 2.【表2】
2. 3 Western 印迹法检测周期蛋白 CDK2、cyclinD1 和 p21 的表达变化 siRNA 抑制 S100A4 48 h 后,细胞周期蛋白 CDK2和 CyclinD1 均明显低于正常对照组及无关 siRNA 转染组( CDK2 10% FCS+siS100A4 组: 0. 61±0. 02 vs. 10% FCS 正常培养组: 0. 33±0. 01; 10%FCS+siCon 组 0. 35±0. 01 P<0. 05,n=3,CyclinD1 10% FCS+siS100A4 组: 0. 61±0. 02 vs. 10% FCS 正常培养组: 0. 51±0. 01; 10% FCS+siCon 组 0. 46±0. 01 P<0. 05,n =3) ; 同样 p21( 10. 45 ±0. 01,P <0. 05) 也出现类似的变化趋势。见图 1.【图1】
3 讨 论
本结果提示 S100A4 可能是细胞增殖的正调控因子,与其在心肌和平滑肌细胞的作用研究结果类似〔3 ~5〕.细胞周期的改变必然伴随着细胞周期蛋白的变化。在人类增殖性肾炎组织中肾小球内 E2F1、cyclinD1、CDK2 等细胞周期相关调控因子的表达显着上调〔6〕.本研究结果证实抑制 S100A4 可引起促进细胞进程的相关蛋白 CyclinD1 和 CDK2 的表达水平降低。但抑制细胞周期进程的基因 p21 却同样出现了下调,该基因的表达下调,可能是细胞周期负反馈调节的代偿现象,虽然表达下调,但可能不足以抑制促进细胞周期进程的相关蛋白的作用。
参考文献
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