卡特兰DNA的提取

　　第二章 DNA 的提取

　　2.1 试验材料与研究方法

　　2.1.1 试验材料与试剂及器材

　　2.1.1.1 试验材料

　　试验材料取自中国林科院温室培养的卡特兰品种漂亮女孩‘考娃’。漂亮女孩‘考娃’是着名的大花品种，其生长健壮，开花容易，花初开时花瓣白色中带有绿色，后变为略带粉色，盛开后将近全白，十分有趣。此外其花瓣颜色和唇瓣颜色形成强烈对比，具有淡淡花香，不仅具有很高的观赏价值，还是很好的育种亲本。

　　

　　2.1.1.2 试剂

　　试剂为 CTAB、SDS、试剂盒(天根)，Tris-HCl、NaCl、EDTA、5 mol/LKAc、氯仿、异戊醇、70%乙醇、无水乙醇、TE 缓冲液、蒸馏水、液氮、Golden view(艾德莱生物试剂有限公司)、Loading Buffer(天根生物试剂有限公司)、Marker 1kb ladder（天根生物试剂有限公司）以下为溶液的配制方法:

　　（1）0.5M EDTA(PH8.0)：18.61g EDTA 加入 80mol 双蒸水，加入 NaoH(促溶，约 2g)调节 pH8.0，EDTA 完全溶解后，定容至 100ml，灭菌室温保存。

　　（2）1M Tris-HCl(PH8.0)：12.11g Tris 碱加入 80ml 双蒸水，加浓盐酸调 pH8.0，加水定容至 100ml，灭菌室温保存。

　　（3）5 M NaCl：29.2g NaCl 加入 50ml 双蒸水，加水定容至 100ml，灭菌室温保存。

　　（4）CTAB 提取液：取 2g CTAB 粉末放入瓶中，加入 10ml 浓度为 1M/L 的 Tris-HCL，加入4ml配好的0.5M/L的EDTA，再加入28ml 5M/L的NaC1，加入58ml双蒸水至100ml，灭菌室温保存。

　　（5）SDS 缓冲液配制：取 2g SDS，10ml 配好的 1M/L 的 Tris-HCL，4ml 配好的 0.5M/L的 EDTA，再加入 28ml 5M/L 的 NaC1，加入 58ml 双蒸水至 100ml，灭菌室温保存。

　　（6）醋酸钾溶液配制：49.07g KAC 加入 60ml 双蒸水，加冰乙酸调节 PH 到 5.3，加水定容至 100ml，灭菌室温保存。

　　（7）TE 缓冲液（pH8.0）：取 1ml 浓度为 10mM/L 的 Tris-HCL，0.2ml 配好的 0.5M/L的 EDTA ，再加入 98.8ml 双蒸水至 100ml。灭菌室温保存。

　　（8）氯仿：异戊醇（24:1）：将氯仿和异戊醇以 24 比 1 的体积比混合，装在棕色试剂瓶中待用。

　　2.1.1.3 试验器材

　　试验器材为镊子、刀片、锡箔纸、液氮罐、水浴锅、试剂瓶、移液器、手套、冰箱、高压灭菌锅、1.5ml 的离心管、2.0ml 离心管、移液枪，枪头、锥形瓶、电泳槽、计算机、凝胶成像仪、离心机、振荡器、紫外分光光度计、研钵、研棒、烘箱。

　　2.1.2 试验方法
　　
　　2.1.2.1 取材与保存

　　在温室用刀片切取卡特兰叶片 3～5 g，将其包裹在锡箔纸中，用记号笔在锡箔纸上做好标记，迅速放入小液氮罐中，以防止材料氧化。将材料装在小液氮罐中带回重点实验室进行试验。

　　2.1.2.2 试验前准备

　　除了试验中所用有机溶剂不用做处理，其余的所有的接触 DNA 的容器，器材以及蒸馏水都需进行高压灭菌，以消除外源的污染。

　　准备开始试验之前要先将水浴锅打开并调到所需要的温度，将提取液放入水中，进行预热。实验中要用到预冷的无水乙醇，将其放入-20℃冰箱中预冷。一切准备好之后，带好线手套，开始将材料从液氮罐中取出，准备进行实验。

　　2.1.2.3 实验方法

　　（1）CTAB 法提取 DNA

　　①将材料用液氮研磨成粉末，取约 700?l 转入 2ml 离心管中，迅速加入 700?l CTAB溶液，进行摇匀震荡，混匀后水浴，每隔 5 min 摇匀，水浴 40min。②取出离心管，加入700?l 氯仿异戊醇，温和摇动，使其呈乳液状，12000 rpm 离心 10min。③取出离心管，用移液枪吸取上清液，转移入新的离心管中。④加入 2 倍体积-20℃预冷的无水乙醇，颠倒混匀，放入-20℃静置 40min。5000rpm/min 离心 2min 后，弃上清。⑤向离心管中加入600?l 70%乙醇洗涤沉淀两次，轻轻晃动离心管，使 70%乙醇与 DNA 充分接触，5000rpm/min 离心 2min 弃掉上清，留下沉淀，用无水乙醇洗涤沉淀，洗后 5000rpm/min离心 2min，在室温下倒置晾干至刚出现半透明状态为止。晾干后溶于 200?lTE 溶液中，保存于 4℃。

　　（2）SDS 法提取 DNA

　　①将材料用液氮研磨成粉末后转入 2ml 离心管中，迅速加入 1.2 ml 于 65℃水浴锅中预热的提取缓冲液，65℃水浴中保温 60min，每隔 5 min 晃动几次；②取出后加入0.45ml 5mol/L KAc，振荡，然后冰浴 30min；在 12000 rpm 离心 10 min；③吸取上清转入另外一个离心管中，加入等体积的氯仿：异戊醇（24:1），轻缓摇匀；④ 12000 rpm 离心 10 min，吸取上清加入 2 倍体积的无水乙醇，颠倒混匀；将离心管放置-20℃冰箱 40分钟。⑤10000 rpm，离心 5min，收集沉淀。弃上清，70％乙醇洗两次。⑥室温下凉干加TE 缓冲液使沉淀完全溶解放入-20℃冰箱中保存备用。

　　（3）试剂盒(天根生化科技有限公司)提取法

　　①将抽提缓冲液(2%CTAB)置于 65℃水浴锅中预热。②将新鲜叶片置于液氮中迅速研磨成粉末,每个样取 0.2g 左右移至 2ml 离心管中，加入 700?l 65℃预热的抽提液迅速振荡混匀。③ 65℃水浴 40min，每 5-7min 颠倒离心管充分混匀，在此过程中注意轻摇轻放。

　　④取出后室温冷却，加入 700?l 氯仿，颠倒充分混匀，12000rpm，离心 6min。⑤取上清液转入新的离心管中，加入等体积缓冲液(约 700?l)，再次颠倒充分混匀。⑥将混匀的液体转入吸附柱中，12000rpm，离心 1min，弃除下部废液。⑦如步骤⑤中还有剩余液体可重复步骤⑥。⑧向吸附柱中加入 500?l 缓冲液，离心 1min,弃废液。⑨加入 700?l 漂洗液PW，离心 1min，弃废液，重复一次。⑩打开吸附柱的盖子，12000rpm 离心 3min，弃废液，室温中放置 20-30min，以彻底晾干残留的漂洗液，无乙醇味即可。?悬空加入50-100ulTE 缓冲液，室温放置 5min，12000rpm 离心 2min，重复一次，放入-20℃冰箱中保存备用。

　　（4）DNA 浓度与纯度的检测

　　量取 40mlTAE 溶液于三角瓶中，称取 0.4g 琼脂糖溶于 TAE 溶液中，配制浓度为 1%的胶。将三角瓶放在微波炉中加热，待琼脂糖全部溶解，取出三角瓶加入 0.2?l Golden view核酸染料，倒入电泳槽，待自然冷却将制好的胶放入电泳槽中，使缓冲液刚好超过凝胶面约 1mm；向点样孔中加入 5?l 的 Marker；将 1?l Loading Buffer 与 5?l DNA 混匀，将其点入点样孔中。同样方法进行其他点样。在 120V 电压，400mA 电流下电泳 45min。

　　将胶从胶板上取出，放在在紫外透射仪下进行质量检测拍照。

　　用紫外分光光度计测量 DNA 的含量和质量时要用溶解 DNA 的 TE 作空白对照，于紫外分光光度计上测定 260nm、280nm 和 230nm 吸收值，记录 A260/A230 和 A260/A280的比值，并记录下核酸的含量。

　　2.2 试验结果与分析

　　2.2.1 试验结果

　　

　　1,2 泳道为用天根试剂盒提取的卡特兰 DNA，3,4 泳道为用 CTAB 法提取的卡特兰DNA，5,6 泳道为用 SDS 法提取的卡特兰 DNA。M 为使用的 1kb ladder 的 Marker（见图2-2）。1,2 号为试剂盒方法提取的 DNA 的紫外吸收值，3,4 号为 CTAB 法提取的 DNA 的紫外吸收值，5,6 号为 SDS 法提取的 DNA 的紫外吸收值（见表 2-1）。

　

　　2.2.2 试验分析

　　电泳图像表明三个方法都提取出了 DNA。具体分析如下：（1）1,2 泳道是用试剂盒提取的 DNA，其条带整齐，表明 DNA 质量较好；DNA 条带上方有轻微弥散，可能含有少量的蛋白等大分子杂质，下方有轻微弥散，可能有轻微的 DNA 断裂。试剂盒提取的DNA 的紫外吸收值显示 A260/280 值均大于 2.0，A260/230 均大于 2.0，表明质量合格，但是 DNA 有断裂。（2）3,4 泳道是用 CTAB 法提取的 DNA，从电泳图上可以看出 DNA下方出现明显亮带，表明 RNA 污染严重，同时 DNA 下方有拖尾，可能是有盐类等小分子等杂质。3,4 号的紫外吸收值显示 CTAB 法提取的 DNAA260/280 值在 1.9 和 2.0 之间，表明有 RNA 污染。A260/230 小于 1.8，说明含有糖类或者盐类等小分子杂质。（3）5,6泳道是用 SDS 方法提取出来的 DNA 的电泳图，从电泳图可以看出胶孔处明显发亮，说明有蛋白质等大分子杂质，表明蛋白质污染严重。DNA 带下方 RNA 处有明显发亮的带，表明 RNA 污染严重。5,6 号的紫外吸收值 A260/280 大于 2，还表示 DNA 出现断裂，A260/230 都在 1 附近，远远小于合格值 2.0，所以说明糖类等杂质污染严重。

　　从表 2-1 的 DNA 含量可以看出三种方法提取 DNA 含量差异显着，含量平均值从高到低依次为 CTAB 法（587.45±40.94 ng/?l ），SDS 法（405.50±36.76 ng/?l）和试剂盒法（104.16±5.74ng/?l）。CTAB 法提取的 DNA 含量均值为 587.45±40.94 ng/?l，SDS 法提取的 DNA 含量均值为 405.50±36.76 ng/?l，试剂盒提取的 DNA 含量明显低于 CTAB法和 SDS 法，平均值为 104.16±5.74ng/?l。

　　通过比较发现用试剂盒提取的 DNA 虽然有 DNA 断裂现象，质量优于其他两种方法，但是 DNA 含量最低，远远小于其他两种方法的提取量。CTAB 法和 SDS 法提取的 DNA有杂质污染，从 DNA 的紫外吸收值比较二者，看出 CTAB 法提取的 DNA 质量和含量明显优于 SDS 方法提取的 DNA。

　　CTAB 法和试剂盒法相比较，虽然 CTAB 质量相对较差，但是 DNA 提取量为试剂盒的 5 倍以上，而且 CTAB 法价格较低，大量提取时所需费用仅为试剂盒的几百分之一。

　　所以选择 CTAB 法为最终方法，下一步进行其改良。

　　2.3 小结

　　在质量方面，3 种方法提取的 DNA 质量从高到低依次为试剂盒法，CTAB 法，SDS法。3 种方法提取的 DNA 含量从小到大依次为 CTAB 法，SDS 法，试剂盒法。3 种方法所需的费用从高到低排序依次为试剂盒法，SDS 法和 CTAB 法。试剂盒价格十分昂贵，实验成本是 CTAB 和 SDS 方法的百倍。比较 CTAB 和 SDS 方法，CTAB 法提取的 DNA从质量还是含量上都要优于 SDS 方法，所以从提取 DNA 的质量，含量，以及价格 3 个方面考虑，选 CTAB 法为最适合卡特兰 DNA 提取的方法，进行下一步优化。